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AI+SPR:Science+NCB頂刊教你“玩轉(zhuǎn)”表位識別

來源:Cytiva(思拓凡) 更新時間:2026-01-16 18:30:26 閱讀量:95
導(dǎo)讀:關(guān)注Cytiva學(xué)堂,獲取更多干貨知識

01

針對肽-MHC-I復(fù)合物的高特異性binder蛋白設(shè)計

MHC-I類分子在細胞表面呈遞源自細胞內(nèi)抗原的肽段,用于免疫監(jiān)視,而針對這些肽-MHC(pMHC)復(fù)合物的特異性靶向在疾病治療中具有重要應(yīng)用價值。然而,這種靶向非常具有挑戰(zhàn)性,因為它需要識別肽抗原中少量向外暴露的殘基,同時避免與幾乎所有細胞上都存在的MHC載體發(fā)生廣泛接觸。

諾獎得主David Baker團隊在Science上發(fā)表文章,使用 深度學(xué)習(xí)驅(qū)動的蛋白質(zhì)設(shè)計工具(RFdiffusion + ProteinMPNN),從頭設(shè)計(de novo)小型蛋白(<150 aa),使其跨越MHC肽結(jié)合槽并與肽段形成廣泛接觸。通過AlphaFold2/3和Chai-1預(yù)測驗證結(jié)構(gòu),結(jié)合部分擴散(partial diffusion)策略快速適配不同pMHC目標。

針對10個不同的pMHC復(fù)合物(涵蓋病毒抗原、腫瘤相關(guān)抗原、neoantigen),設(shè)計并篩選出高特異性結(jié)合蛋白。全基因合成后克隆到pET29b(+) 載體中,大腸桿菌表達后,使用Ni柱和凝膠過濾(Superdex 75 10/300GL)兩步純化。

結(jié)合動力學(xué)分析在Biacore8K通過Biotin CAPture Kit捕獲法完成。捕獲生物素化的肽-MHC單體約250 RU,蛋白binder(分析物)在HBS-EP+緩沖液中,以30 μL/min 流速進樣,濃度范圍為1 nM 至1 μM。

結(jié)果顯示,設(shè)計的蛋白與目標 pMHC 的結(jié)合親和力在 幾到幾十納摩爾(nM)范圍(圖1,圖2),顯示出高親和力。

圖1:針對HIV (b)和 MAGE-A3 (c)設(shè)計的蛋白binder的凝膠過濾圖譜,SPR結(jié)合傳感圖,結(jié)構(gòu)模型

圖2:針對PRAME binder A9/A2結(jié)合

PRAME pMHC單體的SPR結(jié)合傳感圖

關(guān)于文中提到的可逆捕獲生物素化配體的Biotin CAPture Kit的詳細信息,可參考:

Biotin CAPture Kit方案:輕松搞定生物素化配體可逆捕獲!

此外,我們的新品Biacore cap-tag捕獲試劑盒,通過獨特的寡核苷酸標簽(cap-tag)技術(shù),無需依賴傳統(tǒng)標簽,即可將目標蛋白高效捕獲到傳感芯片上,可參考:

新品速遞丨Biacore cap-tag捕獲試劑盒:解鎖無標記蛋白互作分析新體驗

02

利用深度學(xué)習(xí)精確設(shè)計單域蛋白支架

呈現(xiàn)三個非重疊表位

傳統(tǒng)蛋白設(shè)計通常只能在一個支架上呈現(xiàn)單一功能位點,而天然蛋白往往具有多個功能位點。在疫苗設(shè)計中,能在一個免疫原上同時呈現(xiàn)多個病毒中和表位,有望提高免疫反應(yīng)并減少非中和位點的免疫優(yōu)勢。

諾獎得主David Baker團隊在Nature Chemical Biology上發(fā)表文章,利用深度學(xué)習(xí)方法(RoseTTAFold、RFjoint2 Inpainting)和ProteinMPNN,設(shè)計了小型單域免疫原(<130 aa),在一個支架上呈現(xiàn)三個RSV(呼吸道合胞病毒)融合蛋白表位(II、IV、V)。

設(shè)計的免疫原支架全基因合成后克隆到pET11b載體中,E.?coli BL21 (DE3)表達后,使用Ni柱和凝膠過濾(HiLoad 16/600 Superdex 75 column)兩步純化。

RSVF蛋白ExpiCHO細胞表達,使用Ni柱,StrepTrap HP affinity column和凝膠過濾(Superdex200 Increase 10/300 GL column)三步純化。

抗體IgG和Fab蛋白HEK-293T細胞表達,使用5 ml HiTrap Protein A HP 柱純化IgG,使用5 ml kappa-select 柱純化 Fab,通過Superdex200 Increase 10/300 GL柱進行 凝膠過濾進一步純化。

SPR測定在Biacore 8K儀器上使用CM5芯片完成。固定設(shè)計的免疫原支架以及 RSVF 三聚體,流過Fab抗體(圖3)?;蛘吖潭ǜ鞣NIgG ,流過設(shè)計的單體蛋白(圖4)。分析物3倍或6倍梯度稀釋進樣,結(jié)合120s,解離600s,使用0.1?M Glycine (pH 3.0)再生。

結(jié)果顯示,單表位設(shè)計(RSVFV-1 至 RSVFV-4):KD 范圍:54–241 nM(比天然 RSVF 三聚體的0.9 nM 差約50倍,但比之前報道的設(shè)計0.9? μM提高約20倍)。

圖3:針對 RSV90 Fab 的四種設(shè)計的SPR穩(wěn)態(tài)親和力測定


三表位設(shè)計(RSVF-multi-1 至 RSVF-multi-4):

Site II(motavizumab):14–47 nM(天然 RSVF ~15 pM);

Site IV(101F):343–890 nM(天然 RSVF ~2 nM);

Site V(RSV90):>1 μM(天然 RSVF ~0.9 nM)。

圖4:針對三種特異性表位抗體RSV90(site V), motavizumab(site II), 101F(site IV)的各四種設(shè)計的 SPR 穩(wěn)態(tài)親和力測定

SPR 數(shù)據(jù)驗證了設(shè)計蛋白能與目標抗體結(jié)合,且多表位設(shè)計在結(jié)構(gòu)復(fù)雜度增加的情況下仍保持納摩爾級結(jié)合能力,證明深度學(xué)習(xí)方法在多表位免疫原設(shè)計中的可行性。

03

抗體結(jié)構(gòu)引導(dǎo)的in silico表位疫苗設(shè)計

——針對新興病毒誘導(dǎo)強效免疫應(yīng)答

西北農(nóng)林科技大學(xué)和中科院水生所的研究團隊,在《Journal of Virology》發(fā)表文章,以羅非魚湖病毒(TiLV)為模型,提出了一種全新的“抗體結(jié)構(gòu)引導(dǎo)的表位疫苗”設(shè)計策略。先從感染魚體內(nèi)篩選高親和力單鏈抗體(scFv),再通過抗原-抗體分子對接鎖定關(guān)鍵表位,最后用單氨基酸隨機突變在電腦里“進化”出更優(yōu)的疫苗候選序列。最終得到的優(yōu)化表位S390F,在羅非魚體內(nèi)誘導(dǎo)了顯著的IgM應(yīng)答、非特異性免疫酶活性以及免疫基因上調(diào),對TiLV攻毒的相對保護率(RPS)提升約25%。

研究使用計算機輔助設(shè)計結(jié)合實驗驗證:通過ELISA、Western blot、免疫組化、SPR等方法驗證表位與抗體結(jié)合能力及免疫效果。SPR測定在 Biacore T200儀器上使用CM5芯片完成。將 S390F肽通過氨基偶聯(lián)固定在FC2上,F(xiàn)C1作為參比。運行緩沖液為1×PBS(pH 7.4)+5% DMSO。通過不同濃度的DMSO(4.5%–5.8%)自動生成溶劑校正曲線。將稀釋后的抗體scFv1進樣,使用10 mM Gly-HCl(pH 2.0)再生。

圖5:利用SPR技術(shù)分析表位肽S390F與純化抗體scFv1之間的結(jié)合能力

S390F與scFv1的KD值為573 nM,顯示強結(jié)合能力,優(yōu)于其他突變肽(如T395F、S404Y)和原始P30肽。SPR驗證了計算機模擬的可行性,證明抗體結(jié)構(gòu)引導(dǎo)的表位優(yōu)化策略有效。該結(jié)果與ELISA、免疫學(xué)實驗一致,進一步確認 S390F是免疫增強型表位疫苗的最佳候選。

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Biacore作為被中美日等多國藥典收錄的分子互作檢測“金標準”,已廣泛應(yīng)用到基礎(chǔ)科研與藥物開發(fā)的多個領(lǐng)域。

截至目前,借助Biacore累計發(fā)表的文章已突破68000篇,超過100種的已上市藥物的研發(fā)、申報、生產(chǎn)過程中也均有Biacore的身影。同樣期待越來越多的AI輔助藥物開發(fā),造福臨床,造福人類。

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參考文獻

[1] Design of high-specificity binders for peptide-MHC-I complexes. Science. 2025 Jul 24;389(6758):386-391. doi: 10.1126/science.adv0185. Epub 2025 Jul 24.

[2] Accurate single-domain scaffolding of three nonoverlapping protein epitopes using deep learning. Nat Chem Biol. 2025 Dec 5. doi: 10.1038/s41589-025-02083-z.

[3] Design of antibody structure-guided epitope vaccines in silico to induce potent immune responses against emerging viruses. J Virol. 2025 Dec 23;99(12):e0068925. doi: 10.1128/jvi.00689-25. Epub 2025 Nov 11. 



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